АНТИБИОТИКОЧУВСТВИТЕЛЬНОСТЬ ВОЗБУДИТЕЛЕЙ КИШЕЧНЫХ ИНФЕКЦИЙ СЕЛЬСКОХОЗЯЙСТВЕННОЙ ПТИЦЫ

В.Г. Пилипейко, А.Г. Мындря, Пятигорский филиал ФГУ СМВЛ

О.П. Татарчук, Кубанский ГАУ

Заболевания желудочно-кишечного тракта занимают особое место среди всей патологии сельскохозяйственной птицы, так как зачастую усугубляются при погрешностях в кормлении и содержании и становятся особенно актуальны для молодняка птицы. Поэтому в условиях как промышленного, так и подсобного птицеводства особое внимание следует уделить организации ветеринарных мероприятий по борьбе с бактериальными кишечным инфекциям.

Анализируя данные исследований, можно отметить, что на птицефабриках страны широкое распространение имеют различные штаммы грамотрицательных и грамположительных микроорганизмов, таких как Salmonella sp. , Escherichia coli ., Proteus sp., Pasteurella multocida , Pseudomonas aeruginosa , в том числе имеющие множественную лекарственную резистентность (Lin et al., 1993). Эти же микроорганизмы обуславливают секундарные инфекции, осложняя, в частности, течение большинства вирусных и протозойных заболеваний. В этих случаях единственным выходом является рациональное использование надёжных и безопасных противобактериальных средств, и в первую очередь – антибиотиков.

Использование антибиотиков в птицеводстве (в отличие от животноводства) имеет ряд особенностей, при этом основным является практическая невозможность индивидуального применения препаратов. Очевидно, что антибактериальный препарат для птицеводства должен быть растворен в питьевой воде или смешан с кормом. Не менее важным моментом является низкая токсичность и хорошая переносимость используемого антибиотика. Однако в условиях птицеводческого хозяйства на первый план выступает чувствительность микрофлоры к используемым противомикробным препаратам. Последнее обстоятельство значительно осложняет выбор антибиотика для ликвидации вспышки желудочно-кишечных инфекций у поголовья.

С целью выбора наиболее рациональных схем противобактериальных лечебно-профилактических обработок нами были проведены исследования антимикробной активности некоторых препаратов, используемых в промышленном птицеводстве. Бактериологические исследования проводились на базе Пятигорской зональной ветеринарной лаборатории. В исследованиях использовались следующие противобактериальные препараты: левомицетин, полимиксин, тетрациклин, энрофлоксацин, фуразолидон, неомицин, стрептомицин, гентамицин, апрамицин. Изолированные из патологического материала от различных половозрастных групп кур штаммы возбудителей кишечных инфекций ( E .  coli , S almonella enteritidis, Proteus mirabilis, Pseudomonas aeruginosa, Pasteurella multocida ) тестировались на чувствительность к препаратам методом серийных разведений согласно дозировкам, рекомендованным компаниями-производителями препаратов; результаты исследований обрабатывались статистически.

На рис. 1 представлены данные по противобактериальной активности некоторых препаратов в отношении изолированных ( N =17) штаммов Salmonella enteritidis .

Рисунок 1 - Чувствительность штаммов S . enteritidis к противобактериальным препаратам

Как видно из диаграммы, максимальную противобактериальную активность в отношении изолированных штаммов сальмонеллы продемонстрировал апрамицин (d =28). Это согласуется с данными, полученными Wray et al. (1086) при исследовании антибиотикочувствительности полевых изолятов кишечной палочки и сальмонелл. Как показывают аналогичные данные по мониторингу возбудителя сальмонеллеза, практически 100% штаммов сальмонелл демонстрируют высокую чувствительность к апрамицину ( Wray et al., 1993; Cruchaga et al., 1999).

На рис. 2 представлены данные по противобактериальной активности некоторых препаратов в отношении изолированных ( N =31) штаммов Escherichia coli .

Рисунок 2 - Чувствительность штаммов E . coli к противобактериальным препаратам

Как видно из диаграммы, максимальная (d =21) задержка роста изолированных штаммов кишечной палочки наблюдалась при использовании апрамицина. Это согласуется с данными Leitner  et al. (2001), полученными при исследовании чувствительности энтеропатогенных штаммов кишечной палочки к апрамицину. Следует отметить, что в нашем исследовании ни один (!) из изолированных штаммов E . coli не продемонстрировал чувствительности к левомицетину, что обусловлено неоправданно широким использованием этого препарата в промышленном птицеводстве и, соответственно, развитием резистентности кишечной палочки к нему. Аналогичные данные получены зарубежными авторами, в связи с чем хлорамфеникол (левомицетин) уже не используется для борьбы с коли-инфекцией (Gomez - Lus , 1998). Следует также отметить низкий противобактериальный эффект тетрациклина в отношении кишечной палочки, что также обусловлено неоправданно широким применением препаратов на его основе как в промышленных, так и подсобных птицеводческих хозяйствах. Циркуляция тетрациклинрезистентных штаммов кишечной палочки при этом также обуславливает неудовлетворительные результаты схем лечебно-профилактических обработок с использованием препаратов тетрациклиновой группы.

На рис. 3 представлены данные по противобактериальной активности некоторых препаратов в отношении изолированных ( N =11) штаммов Pseudomonas aeruginosa .

Рисунок 3 - Чувствительность штаммов Ps . aeruginosa к противобактериальным препаратам

Как видно из диаграммы, максимальная противобактериальная активность в отношении изолированных штаммов синегнойной палочки наблюдается у апрамицина ( d =23). Неудовлетворительная эффективность фторхинолонов (в частности, энрофлоксацина) в отношении Ps . aeruginosa обусловлена быстро развивающейся устойчивостью синегнойной палочки к этой группе химиопрепаратов за счет мутаций в гене gyr A , блокирующих действие энрофлоксацина на ДНК-гиразу бактерий ( Brothers et al ., 2002). Следует отметить также нечувствительность изолированных штаммов синегнойной палочки к левомицетину, тетрациклину, стрептомицину и фуразолидону, что также объясняется исключительно быстрым развитием резистентности Ps . aeruginosa к этим противобактериальным средствам.

Таким образом, in vitro апрамицин (в отличие от других исследованных антимикробных средств) продемонстрировал исключительно высокую противобактериальную активность по отношению к наиболее распространенным возбудителям кишечных инфекций сельскохозяйственной птицы. Эти лабораторные данные подтверждаются успешным практическим опытом использования апрамицина в форме водорастворимого порошка как эффективного препарата в системе мер борьбы с бактериальными инфекциями желудочно-кишечного тракта у сельскохозяйственной птицы.

Литература

1. Brothers A.M., Gibbs P.S., Wooley R.E. Development of resistant bacteria isolated from dogs with otitis externa or urinary tract infections after exposure to enrofloxacin in vitro // Vet. Ther., 2002. – Vol. 3(4). – P. 493-500.
2. Cruchaga S ., Echeita A ., Usera M.A . Antimicrobial susceptibility of a selection of Salmonella strains of various origins isolated in Spain // Rev. Esp. Quimioter., 1999. – Vol. 12. – P. 250-4.
3. Gomez-Lus R. Evolution of bacterial resistance to antibiotics during the last three decades // Int. Microbiol., 1998. – Vol. 1. – P. 279-284.
4. Leitner G ., Waiman R ., Heller E.D . The effect of apramycin on colonization of pathogenic Escherichia coli in the intestinal tract of chicks // Vet. Q., 2001. – Vol. 23. – P. 62-6.
5. Lin M.Y ., Cheng M.C ., Huang K.J ., Tsai W.C . Classification, pathogenicity, and drug susceptibility of hemolytic gram-negative bacteria isolated from sick or dead chickens // Avian Dis., 1993. – Vol. 37. – P. 6-9/
6. Wray C ., Hedges R.W ., Shannon K.P ., Bradley D.E . Apramycin and gentamicin resistance in Escherichia coli and salmonellas isolated from farm animals // J. Hyg. (Lond.), 1986. – Vol. 97. – P. 445-56.
7. Wray C ., McLaren I.M ., Beedell Y.E . Bacterial resistance monitoring of salmonellas isolated from animals, national experience of surveillance schemes in the United Kingdom // Vet. Microbiol., 1993. – Vol. 35. – P. 313-9.